Экосистемное и индикаторное значение жирных кислот в составе низкомолекулярного метаболома водных макрофитов
- Авторы: Курашов Е.А.1,2, Крылова Ю.В.1,2, Чернова А.М.1, Ходонович В.В.2,3, Явид Е.Я.2
-
Учреждения:
- Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук
- Санкт-Петербургский Федеральный исследовательский центр РАН
- Санкт-Петербургский филиал Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии им. Л.С. Берга
- Выпуск: Том 17, № 5 (2024)
- Страницы: 858-862
- Раздел: КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ
- URL: https://ta-journal.ru/0320-9652/article/view/670084
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0320965224050168
- EDN: https://elibrary.ru/XQCWEJ
- ID: 670084
Цитировать
Аннотация
Впервые проведена проверка гипотезы, что при антропогенном воздействии (эвтрофирование и загрязнение) водные макрофиты синтезируют и включают в состав своего низкомолекулярного метаболома меньше жирных кислот (по составу и содержанию), чем в чистых, ненарушенных или малонарушенных водных местообитаниях (олиготрофные и мезотрофные условия). Имеющиеся данные свидетельствуют о снижении удельного продуцирования насыщенных и ненасыщенных жирных кислот макрофитами на единицу их биомассы с усилением процессов эвтрофирования и загрязнения в водных экосистемах. Данный факт имеет важное практическое значение, а именно, использование этой закономерности для индикаторной оценки антропогенного воздействия на водные экосистемы.
Полный текст

Об авторах
Е. А. Курашов
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук; Санкт-Петербургский Федеральный исследовательский центр РАН
Автор, ответственный за переписку.
Email: evgeny_kurashov@mail.ru
Институт озероведения Российской академии наук, Санкт-Петербургский Федеральный исследовательский центр РАН
Россия, пос. Борок, Некоузский р-н, Ярославская обл.; Санкт-ПетербургЮ. В. Крылова
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук; Санкт-Петербургский Федеральный исследовательский центр РАН
Email: evgeny_kurashov@mail.ru
Институт озероведения Российской академии наук, Санкт-Петербургский Федеральный исследовательский центр РАН
Россия, пос. Борок, Некоузский р-н, Ярославская обл.; Санкт-ПетербургА. М. Чернова
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук
Email: evgeny_kurashov@mail.ru
Россия, пос. Борок, Некоузский р-н, Ярославская обл.
В. В. Ходонович
Санкт-Петербургский Федеральный исследовательский центр РАН; Санкт-Петербургский филиал Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии им. Л.С. Берга
Email: evgeny_kurashov@mail.ru
Институт озероведения Российской академии наук, Санкт-Петербургский Федеральный исследовательский центр РАН
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургЕ. Я. Явид
Санкт-Петербургский Федеральный исследовательский центр РАН
Email: evgeny_kurashov@mail.ru
Институт озероведения Российской академии наук
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Бусева Ж.Ф., Гладышев М.И., Сущик Н.Н. и др. 2021. Эффективность переноса биологически ценных веществ от фитопланктона к планктонным ракообразным в мезотрофном оз. Обстерно (Беларусь) // Биология внутр. вод. № 4. С. 367. https://doi.org/10.31857/S0320965221030037
- Крылов А.В., Гладышев М.И., Косолапов Д.Б. и др. 2011. Влияние колонии серой цапли (Ardea cinerea L.) на планктон малого озера и содержание в нем незаменимых полиненасыщенных жирных кислот // Сиб. экол. журн. Т. 18. № 1. С. 59.
- Крылова Ю.В., Курашов Е.А., Русанов А.Г. 2020. Сравнительный анализ компонентного состава низкомолекулярного метаболома горца земноводного (Persicaria amphibia (L.) Delarbre) из разнотипных местообитаний в Ладожском озере // Тр. Карельск. науч. центра РАН. № 4. С. 95. https://doi.org/10.17076/lim1141
- Крылова Ю.В., Курашов Е.А., Протопопова Е.В. и др. 2024. Состав низкомолекулярного метаболома Potamogeton perfoliatus L. как индикатор трансформации экологического состояния литоральной зоны // Биология внутр. вод. № 4 С. (С. 355.).
- Сущик Н.Н. 2008. Роль незаменимых жирных кислот в трофометаболических взаимодействиях в пресноводных экосистемах (обзор) // Журн. общ. биол. Т. 69. № 4. С. 299.
- Alford R.A. 1999. Ecology: resource use, competition, and predation // Tadpoles: The Biology of Anuran Larvae. Chicago: Univ. of Chicago Press.
- Altig R., Whiles M.R., Taylor C.L. 2007. What do tadpoles really eat? Assessing the trophic status of an understudied and imperiled group of consumers in freshwater habitats // Freshwater Biol. V. 52. P. 386. https://doi.org/10.1111/j.1365-2427.2006.016
- Bandara T., Brugel S., Andersson A. et al. 2023. Retention of essential fatty acids in fish differs by species, habitat use and nutritional quality of prey // Ecol. Evol. V. 13. № 6. e10158. https://doi.org/10.1002/ece3.10158
- Bashinskiy I.W., Dgebuadze Yu.Yu., Sushchik N.N. et al. 2023. Spadefoot Pelobates vespertinus (Amphibia, Pelobatidae) as a transmitter of fatty acids from water to land in a forest-steppe floodplain // Sci. Tot. Environ. V. 877. P. 162819. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2023.162819
- Gladyshev M.I., Sushchik N.N. 2019. Long-chain omega-3 polyunsaturated fatty acids in natural ecosystems and the human diet: assumptions and challenges // Biomolecules. V. 9. № 9. Р. 485. https://doi.org/10.3390/biom9090485
- Gladyshev M.I., Arts M.T., Sushchik N.N. 2009. Preliminary estimates of the export of omega-3 highly unsaturated fatty acids (EPA+DHA) from aquatic to terrestrial ecosystems // Lipids in Aquat. Ecosyst. P. 179. https://doi.org/10.1007/978-0-387-89366-2_8
- Gladyshev M.I. 2018. Quality and quantity of biological production in water bodies with different concentration of phosphorus: case study of eurasian perch // Dokl. Biochem. and Biophys. V. 478. № 1. P. 1. https://doi.org/10.1134/s1607672918010015
- Iwai N., Kagaya T. 2007. Positive indirect effect of tadpoles on a detritivore through nutrient regeneration // Oecologia. V. 152. P. 685. https://doi.org/10.1007/s00442-007-0682-6
- Kurashov E., Krylova J., Protopopova E. 2021. The Use of allelochemicals of aquatic macrophytes to suppress the development of cyanobacterial “blooms” // Plankton Communities. London: IntechOpen. https://doi.org/10.5772/intechopen.95609
- Kurashov E.A., Krylova J.V., Mitrukova G.G. et al. 2014. Low-molecular-weight metabolites of aquatic macrophytes growing on the territory of Russia and their role in hydroecosystems // Contemp. Probl. Ecol. V. 7. № 4. P. 433. https://doi.org/10.1134/S1995425514040064
- Kurashov E.A., Mitrukova G.G., Krylova J.V. 2018. Interannual variability of low-molecular metabolite composition in Ceratophyllum demersum (Ceratophyllaceae) from a Floodplain lake with a changeable trophic status // Contemp. Probl. Ecol. V. 11. № 2. P. 179. https://doi.org/10.1134/S1995425518020063
- Li B., Yin Y., Kang L. et al. 2020. A review: Application of allelochemicals in water ecological restoration – algal inhibition // Chemosphere. P. 128869. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2020.128869
- Nakai S., Yamada S., Hosomi M. 2005. Anti–cyanobacterial fatty acids released from Myriophyllum spicatum // Hydrobiologia. V. 543. P. 71–78. https://doi.org/10.1007/s10750-004-6822-7
- Nezbrytska I., Usenko O., Konovets I. et al. 2022. Potential use of aquatic vascular plants to control cyanobacterial blooms: a review // Water. V. 14. № 11. P. 1727. https://doi.org/10.3390/w14111727
- Scharnweber K., Chaguaceda F., Dalman E. et al. 2020. The emergence of fatty acids – aquatic insects as vectors along a productivity gradient // Freshwater Biol. V. 65. P. 565. https://doi.org/10.1111/fwb.13454
- Schlechtriem C., Arts M.T., Zellmer I.D. 2006. Effect of temperature on the fatty acid composition and temporal trajectories of fatty acids in fasting Daphnia pulex (Crustacea, Cladocera) // Lipids. V. 41. № 4. P. 397. https://doi.org/10.1007/s11745-006-5111-9
- Twining C.W., Brenna J.T., Hairston N.G. et al. 2015. Highly unsaturated fatty acids in nature: what we know and what we need to learn // Oikos. V. 125. № 6. P. 749. https://doi.org/10.1111/oik.02910
- Twining C.W., Parmar T.P., Mathieu-Resuge M. et al. 2021. Use of fatty acids from aquatic prey varies with foraging strategy // Frontiers in Ecol. and Evol. https://doi.org/10.3389/fevo.2021.735350
- Zhu X., Dao G., Tao Y. et al. 2021. A review on control of harmful algal blooms by plant-derived allelochemicals // J. Hazardous Mat. V. 401. P. 123403. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2020.123403
- Wang H.Q., Zhu H.J., Zhang L.Y. et al. 2014. Identification of antialgal compounds from the aquatic plant Elodea nuttallii // Allelopathy J. V. 34. P. 207.
Дополнительные файлы
